domingo, 6 de junio de 2010

Tarea 5

Establecer y describir las técnicas de determinación que se ha empleado en la
determinación del/ de los analito/s en la/s muestra/s del tema asignado a cada grupo.


Se han descrito en la tarea 4. Dado que en la Cromatografía en Capa Fina (CCF), no se pueden emplear para determinaciones presuntivas o de screening en muestras de orina provenientes de pacientes farmacodependientes en proceso de rehabilitación. Y la técnica FPIA, la hemos citado como ejemplo de que existe más técnicas no desarrolladas en el programa de la asignatura, realizaremos el siguiente apartado de la tarea 5 con datos ficticios de la Cromatografía de gases con detector de espectrometría de masas (GCMS).

Decir en cada caso cual es el límite de detección, límite de cuantificación, sensibilidad y recta de calibrado de los métodos analíticos descritos.

Ante una muestra de concentración desconocida, se realiza la medida de la señal obtenida (SM) y ésta se interpola en la función (recta de calibrado)para obtener el resultado (concentración del analito en la muestra, CM).
La técnica de regresión por mínimos cuadrados proporciona la ecuación de la recta de calibrado.
Límite de detección: Es la mínima concentración o peso de analito que proporciona una señal en el instrumento analítico significativamente diferente de la señal del blanco o señal de fondo.

Blanco. N = 20
0,000 (x 15); 0,001 (x 3); 0,002 (x2)
_
Yb = 4,5 x 10 - 4
Sb = [ [ ((0.001 - 10 - 4) 2 ) x 3 + ((0,002 - 10 - 4) 2) x 2 ] / (20 – 1) ] 1/2 =
= 7,1 x 10 -4

Ylod = Yb + 3 Sb
Ylod = (4,5 x 10 - 4) + 3 *( 7,1 x 10 -4) = 2,6 x 10 - 3

Límite de cuantificación: Expresa la concentración del analito que puede determinarse con seguridad.

Yloq = Yb + 10 Sb
Yloq = (4,5 x 10 - 4) + 10 *( 7,1 x 10 -4) = 7,55 x 10 -3








Sensibilidad: Expresa la respuesta del instrumento analítico para una concentración determinada de analito.

Un método analítico será más sensible cuanto mayor sea la variación de la señal analítica “y” para una variación de la concentración del analito “x” dada.

La sensibilidad (S) de un método viene dada por la pendiente de la curva de calibrado.

S = 0,0012 ppm

martes, 18 de mayo de 2010

Tarea 4

- Establecer y describir las técnicas de separación que se ha empleado en la determinación del/ de los analito/s en la/s muestra/s del tema asignado a cada grupo.

- Decir en cada caso cual es el objetivo de incorporación de la técnica de separación en cada uno de los casos.

Cromatografía en Capa Fina (CCF)

http://www.scielo.org.ve/scielo.php?pid=S0798 04692003000100010&script=sci_arttext

Para este método procedimos a la extracción de la cocaína y su principal metabolito: la benzoilecgonina, para esto se alcalinizó la orina hasta alcanzar un pH entre 8 y 9, se agregó 10 ml de cloroformo en un embudo de separación; del extracto clorofórmico se tomó una alícuota de 6 ml, el cual se evaporó a sequedad para posteriormente retomarlo con 0,1 ml de ácido acético 2N para sembrarlo en la cromatoplaca y proceder a la migración de la muestra aplicando el sistema de CCF para bases nitrogenadas.
A pesar que la CCF y la LUV nos han dado buenos resultados para detectar cocaína en muestras biológicas y no biológicas en las cuales las mismas se encuentra en concentraciones relativamente altas, los resultados obtenidos en nuestro estudio nos indican que estas metodologías, tal como las realizamos en nuestro laboratorio, no se pueden emplear para determinaciones presuntivas o de screening en muestras de orina provenientes de pacientes farmacodependientes en proceso de rehabilitación, en las cuales la droga se encuentra en concentraciones relativamente bajas.

Inmunoensayo por fluorescencia polarizada (FPIA)

http://www.sertox.com.ar/retel/n13/retel_n13_004.pdf

Se analizaron individualmente un total de 45 muestras de orina, 20 correspondían
a consumidores de marihuana y 25 a consumidores de cocaína. Luego se hizo un pool de muestra arrojando un volumen entre 80-100 mL. Se tomaron 16 alícuotas de 10 mL cada una, 8 alícuotas del pool que contenía benzoilecgonina (BEC) y 8 alícuotas del pool que contenía delta-9- tetrahidrocannabinol (THC). Estas alícuotas fueron almacenadas en material de vidrio (pyrex) y plástico (polipropileno) a temperaturas de 4 y -20ºC, con y sin fluoruro de sodio (NaF) como aditivo conservador, conocida la concentración inicial (tiempo 0) de ambos metabolitos, se hicieron medidas consecutivas a los 2, 4, 6, 8, 16, 32, 64 y 128 días. Utilizando el método de inmunoensayo TDx, considerando el pH. El equipo utilizado fue un TDx marca Abbott, basado en inmunoensayo por polarización de fluorescencia (FPIA). Todo el material utilizado fue lavado y descontaminado en solución de ácido nítrico al 20%. Las muestras fueron suministradas por pacientes que acuden a nuestra unidad con fines de rehabilitación, casos legales o “screening” laborales.

Fundamento de FPIA

http://www.a14.san.gva.es/labm/fpia.htm

El origen de este ensayo radica en la emisión de luz a distintas longitudes de onda con distintas orientaciones espaciales al azar, desde una lámpara de tungsteno. Dicha radiación se filtra de tal modo que solo pasa luz azul (481-489 nm), la cual a su vez atraviesa un polarizador de cristal líquido para producir un rayo de luz azul polarizada plana que será el que incida sobre la muestra.
Es un inmunoensayo competitivo en el que un antígeno marcado con trazador (fluoresceína) se disputa, con el antígeno presente en la muestra, la unión del anticuerpo específico.
Al incidir la luz emitida sobre el trazador, lo eleva a un estado de excitación, tras el cual dicho trazador vuelve a estado de equilibrio emitiendo luz verde (525-550 nm). Cuando la fluoresceína esta ligada a una molécula de anticuerpo de gran tamaño, su rotación en el seno de la muestra disminuye y permite que la emisión de luz verde sea en el mismo plano de polarización que la radiación recibida, mientras que si dicho fluoróforo está unido solo al antígeno (de pequeño tamaño) la rotación es rápida y cuando emite luz verde lo hace ya en otro plano de polarización.
Todo esto implica que cuanto mayor sea la concentración de antígeno (sustancia a medir) en la muestra, menor será la polarización detectada debido a que existirán menos uniones anticuerpo-antígeno-trazador.
También se deduce del funcionamiento de dicha técnica, que se emplee solamente para moléculas de bajo peso molecular, para que no interfiera su tamaño en una menor rotación del antígeno-trazador libre.

Cromatografía de gas (GC) espectrofotometría de masa (MS)

http://www.usam.edu.sv/SiteUmasferrer/InvetigacionInstitucional/Deteccion%20cocaina%20en%20cabello.pdf

Cromatografía de gases con detector de espectrometría de masas (GCMS).

• Se enfrió e inyectó la alícuota en un cromatógrafo Agilent Technologies 6890 acoplado a un detector selectivo de masas Agilent Technologies 5973 inert. La columna capilar utilizada Columna cromatográfica PE-17 entrelazada 50% fenil y 50% metil polisiloxano (30 metros x 0.32 mm. Diámetro Interno, 0.25 μm5 Grosor de Película).
• La temperatura del puerto de inyección 230° C, en la modalidad sin división de flujo
(splitless), 0.75 minutos la interfase a 280°C.
• El horno fue programado con una temperatura inicial de 100°C con un incremento de 25°C por minuto hasta alcanzar 235° C, temperatura que se mantiene por 20 minutos.
• El gas transportador Helio de extrema pureza se usó a una velocidad de flujo de 50ml/minuto.
• Se utilizó el modo SIM (monitoreo de masa de un solo ión), con 4 iones para identificar la benzoilecgonina.
• Los iones utilizados en el monitoreo fueron: 77, 82, 124 y 168. Por ser estos los iones de la benzoilecgonina que se encuentran en mayor abundancia.6
• El tiempo de retención de la sustancia fue de 16.999 minutos.

http://upcommons.upc.edu/revistes/bitstream/2099/2733/1/5CROMGASES.pdf

La cromatografía de gases

En cromatografía de gases, la muestra se inyecta en la fase móvil, la cual es un gas inerte (generalmente He). En esta fase, los distintos componentes de la muestra pasan a través de la fase estacionaria que se encuentra fijada en una columna. Actualmente, las más empleadas son las columnas capilares.
La columna se encuentra dentro de un horno con programación de temperatura. La velocidad de migración de cada componente (y en consecuencia su tiempo de retención en la columna) será función de su distribución entre la fase móvil y la fase estacionaria.
Cada soluto presente en la muestra tiene una diferente afinidad hacia la fase estacionaria, lo que permite su separación: los componentes fuertemente retenidos por esta fase se moverán lentamente en la fase móvil, mientras que los débilmente retenidos lo harán rápidamente. Un factor clave en este equilibrio es la presión de vapor de los compuestos (en general, a mayor presión de vapor, menor tiempo de retención en la columna). Como consecuencia de esta diferencia de movilidad, los diversos componentes de la muestra se separan en bandas que pueden analizarse tanto cualitativa como cuantitativamente mediante el empleo de los detectores seleccionados.
Existen tres técnicas básicas de inyección de muestras (líquidas o gaseosas) en columnas capilares: split, split-less y on column. Las dos primeras consisten en inyectar y vaporizar la muestra en una cámara de vaporización. El sistema split desvía la mayor parte de la muestra fuera del sistema cromatográfico y envía sólo una pequeña fracción a la columna. El método split-less dirige toda la muestra a la columna, por lo que resulta más adecuado para el análisis de trazas o de componentes muy volátiles. La inyección oncolumn se lleva a cabo en frío, eliminando la etapa de vaporización que podría producir la descomposición de los compuestos termolábiles.
En ocasiones, por ejemplo en el caso de muestras de tejidos, se desean analizar los componentes volátiles contenidos en muestras sólidas. En tal caso, es necesario efectuar una extracción previa con un disolvente adecuado e inyectar el extracto en la columna. La extracción de espacio en cabeza (HS: “head-space”) es una alternativa más rápida a la extracción en Soxhlet, que además evita la pérdida de los componentes más volátiles. En este método, la muestra sólida se coloca en un vial sellado con un septum y se calienta durante un tiempo determinado a la temperatura fijada. Durante esta operación, la mayor parte de los compuestos volátiles se transfieren al aire del vial, denominado espacio de cabeza. Se calienta el tiempo suficiente para que se alcance el equilibrio. Seguidamente, con una jeringa se toma una alícuota del aire del vial y se inyecta en el cromatógrafo. La aguja de la jeringa debe calentarse a la misma temperatura que la muestra para evitar condensaciones sobre la misma.

La espectrometría de masas

La espectrometría de masas (MS) es una de las técnicas analíticas más completas que existen. Recientemente, esta técnica se utiliza no sólo en investigación, sino también en análisis de rutina de los procesos industriales, en control de calidad, etc.
Sus principales cualidades son:
- Capacidad de identificación de forma prácticamente inequívoca, ya que proporciona un espectro característico de cada molécula.
- Cuantitativa: permite medir la concentración de las sustancias.
- Gran sensibilidad: habitualmente se detectan concentraciones del orden de ppm o ppb y en casos específicos se puede llegar hasta ppt e incluso ppq.
- Universal y específica.
- Proporciona información estructural sobre la molécula analizada.
- Suministra información isotópica.
- Es una técnica rápida: se puede realizar un espectro en décimas de segundo, por lo que puede monitorizarse para obtener información en tiempo real sobre la composición de una mezcla de gases.
Dentro del espectrómetro de masas, se procede a la ionización de la muestra mediante diferentes métodos. El sistema de ionización más frecuente es el de impacto electrónico que bombardea las moléculas con electrones de una cierta energía, capaces de provocar la emisión estimulada de un electrón de las moléculas y así ionizarlas.
Además de moléculas ionizadas o iones moleculares (M+) también se forman iones fragmento debido a la descomposición de los iones moleculares con exceso de energía. El tipo y proporción relativa de cada uno de estos fragmentos es característico de las moléculas analizadas y de las condiciones del proceso de ionización. Una vez ionizadas las moléculas, se aceleran y se conducen hacia el sistema colector mediante campos eléctricos o magnéticos. La velocidad alcanzada por cada ión será dependiente de su masa. La detección consecutiva de los iones formados a partir de las moléculas de la muestra, suponiendo que se trate de una sustancia pura, produce el espectro de masas de la sustancia, que es diferente para cada compuesto químico y que constituye una identificación prácticamente inequívoca del compuesto analizado. El espectro de masas puede almacenarse en la memoria del ordenador para compararse con los espectros de una colección de espectros (o librería) y proceder a su identificación o puede estudiarse para averiguar la naturaleza de la molécula que le dio origen, etc.

Acoplamiento cromatografía de gases-espectrometría de masas

La cromatografía de gases es una técnica separativa que tiene la cualidad de conseguir la separación de mezclas muy complejas. Pero una vez separados, detectados, e incluso cuantificados todos los componentes individuales de una muestra problema, el único dato de que disponemos para la identificación de cada uno de ellos es el tiempo de retención de los correspondientes picos cromatográficos. Este dato no es suficiente para una identificación inequívoca, sobre todo cuando analizamos muestras con un número elevado de componentes, como es frecuente en cromatografía de gases capilar.
Por otra parte, la espectrometría de masas puede identificar de manera casi inequívoca cualquier sustancia pura, pero normalmente no es capaz de identificar los componentes individuales de una mezcla sin separar previamente sus componentes, debido a la extrema complejidad del espectro obtenido por superposición de los espectros particulares de cada componente.
Por lo tanto, la asociación de las dos técnicas, GC (“Gas Chromatography”) y MS (“Mass Spectrometry”) da lugar a una técnica combinada GC-MS que permite la separación e identificación de mezclas complejas.
La utilización de la cromatografía de gases acoplada a un espectrómetro de masas requiere sistemas especiales de conexión. En principio, se trata de dos técnicas que trabajan en fase gaseosa y necesitan una muy pequeña cantidad de muestra para su análisis, por lo que son muy compatibles.
El único obstáculo serio a la hora de realizar su acoplamiento es que el efluente que emerge de la columna cromatográfica sale a presión atmosférica y debe introducirse en el interior del espectrómetro de masas que trabaja a alto vacío. Actualmente, el acoplamiento directo resulta fácil cuando se utiliza la cromatografía de gases capilar, que es el caso más habitual.
En resumen, una mezcla de compuestos inyectada en el cromatógrafo de gases se separa en la columna cromatográfica obteniendo la elución sucesiva de los componentes individuales aislados que pasan inmediatamente al espectrómetro de masas. Cada uno de estos componentes se registra en forma de pico cromatográfico y se identifica mediante su respectivo espectro de masas.
En este proceso, el espectrómetro de masas, además de proporcionar los espectros, actúa como detector cromatográfico al registrar la corriente iónica total generada en la fuente iónica, cuya representación gráfica constituye el cromatograma o “TIC” (total ion current). En efecto, la corriente iónica generada por todos los iones da lugar a un pico gaussiano de área proporcional a la concentración del compuesto detectado.

Tarea 3

Procesado de la muestra bruta (antes de laboratorio):

- Reducción del tamaño de partícula.

En nuestro caso, como el analito está en una muestra líquida, no es necesario realizar una reducción de partículas.

- Homogeneización.

Como dijimos en el apartado anterior, al analizar una muestra líquida el material ya esta homogeneizado.

- Reducción del tamaño de la muestra.

Para reducir la cantidad de muestra sin que se vea afectado el metabolito se pueden utilizar dos métodos:
• Formación de conos y cuarteado: La muestra se apila en forma de cono y se comprime el vértice con una tabla. El cilindro obtenido se divide en cuatro sectores y se rechazan dos sectores opuestos.
• Utilizando cuarteadores de muestras: El material que se introduce en ellos es obligado a distribuirse regularmente a través de todo el aparato y sale del mismo dividido en dos porciones iguales.
De este modo reduciríamos el tamaño de la muestra haciendo que esta sea más fácil de analizar y que quede reducida proporcionalmente al tamaño de la muestra inicial.

Preparación de la muestra de laboratorio (en laboratorio):

- Tamizado.

Como nuestra muestra es obtenida de aguas residuales, realizaremos una filtración de toda la muestra para eliminar las sustancias sólidas de gran tamaño y posteriormente aplicaremos un tamizado para eliminar también los de menor tamaño. Así obtendremos una muestra líquida que contiene a nuestro analito de interés.
En este paso es importante tener en cuenta que el tamaño de nuestro analito es muy pequeño por lo que aunque realicemos el tamizado este no quedará retenido.

- Destrucción de materia orgánica.

Este sería el procedimiento adecuado a seguir para el análisis de cocaína. Para eliminar la matriz orgánica en la que se encuentra el metabolito debemos tener en cuenta que la cocaína es una molécula orgánica, un alcaloide. En este caso hay un procedimiento mediante el cual hacemos que la cocaína pase a sal y que así pueda cristalizarse. Esto se logra añadiendo un ácido que modifica la estructura del alcaloide.
Posteriormente, utilizando el método de separación de materia orgánica por vía húmeda calentando la muestra hasta que evapore todo el líquido (matriz orgánica) y solo quede el analito (cocaína) cristalizado en el recipiente.


- Secado de las muestras.

Para eliminar los restos de humedad que puedan haber quedado se realiza un secado de la muestra utilizando un recipiente cerrado en el que introducimos una sustancia higroscópica para que absorba la humedad (liofilizador). También se pueden utilizar estufas.

- Pesada.

Se pesa el analito cristalizado pudiendo utilizar dos tipos de balanza, granatarios o balanzas analíticas.

- Disolución de la muestra.

La muestra se diluye en un disolvente para así poder medir su concentración en disolución.
Para ello primero reduciremos a polvo la muestra para que sea más sencillo disolverla. A continuación debemos seleccionar el disolvente. En nuestro caso como tenemos una sal derivada de la cocaína podemos diluirla en agua.

- Preconcentración.

Eliminación de interferencias en caso de ser necesario.
Antes de proceder al análisis es conveniente realizar una medida previa de la concentración del analito por si esta no es suficiente para ser detectada por el instrumento analítico.

- Separación.

Los métodos más utilizados son métodos de extracción clásicos tales como extracción
continua líquido-líquido utilizando Soxhlet con métodos más modernos como la extracción
con fluídos supercríticos, siendo este ultimo poco utilizado.

El primero se realiza con un extractor Soxhlet o simplemente Soxhlet es un tipo de material de vidrio utilizado para la extracción de compuestos, generalmente de naturaleza lipídica, a través de un solvente afin.
El segundo método consiste en que un fluido se someta a condiciones por encima de su presión y temperatura críticas, así se encontraría en su estado supercrítico.
En este estado, la línea de separación de fases líquido-gas se interrumpe. Esto implica la formación de una sola fase en la que el fluido tiene propiedades intermedias entre las de un líquido y las de un gas: así pues, mientras se mantiene una gran difusividad (propia de los gases), se consigue una alta densidad (cercana a la de los líquidos).


http://www.icmab.es/flucomp/fluidoscomprimidos/introduccion.html
http://www.biol.unlp.edu.ar/toxicologia/seminarios/parte_2/alcaloides.html

viernes, 23 de abril de 2010

Tarea 2


Exactitud


Material de Referencia: SRM 1508 a


Previsto para validar métodos usados para la determinación de benzoylecgonina (metabolito de la cocaína) en orina humana. Consiste en 4 botes de orina seca congelada, en cada bote se suministras 10 ml de agua libre de materia orgánica.
Concentraciones certificadas:

Concentration------------------Concentration
-----level---------------------------(ng/ml)

Low ____(1508-a1) ------------ 75,3 +- 3,1
Medium_(1508-a2)------------- 158,8 +- 6,4
High ____(1508-a3)------------303 +- 15
Blank ___(1508-a0)--------------no detected


Evaluadas por NIST (National Institute of Standards and Technology) por dos métodos independientes.
Se calcula de acuerdo con : Expression of Uncertainty in Measurement .


Preparación


SRM 1508a Benzoylecgonina fue preparada por Ciba Corning Diagnostics, Irvine, CA. La orina usada para preparar este material fue tomada de donantes voluntarios para el test, y se encontraron resultados negativos para cocaína y sus metabolitos. El procesado para este SRM fue llevado a cabo bajo condiciones limpias. El volumen de orina fue procesado como un lote. Dicho lote se filtra a través de un filtro de acetato de celulosa. El lote se divide en 4 niveles de concentración separados, a los que se le añade las cantidades apropiadas de benzoylecgonina (obtenida por Sigma Diagnostics, ST. Louis, MO. Se homogeneiza. Todos los niveles se disponen en viales de 10 ml y se les practica la congelación seca.


Métodos de Análisis


Benzoylecgonina se determina por: GC/MS, LC/MS.

GC/MS (cromatografía gas/espectrómetro de masas)

Se preparan 2 botes de cada uno de lo 3 sets para cada nivel del SRM. De cada bote se toma una alícuota. Se ajusta el pH de la alícuota y el material pasa a través de una fase sólida (cartucho de intercambio iónico) de acuerdo con los manuales directores de la benzoylecgonina en orina. El solvente se evapora y el residuo se disuelve en N,O-bis(trimethylsilyl)acetamide. Este solvente reacciona con benzoylecgonina formando el éster derivado TMS.
Las medidas se interpretan usando un campo magnético en el espectrómetro de masas. Las concentraciones del analito se calcula por una interpolación lineal de una curva de calibrado construida independientemente para cada set de muestra.

LC/MS (cromatografía líquida/espectrómetro de masas)


Se preparan 2 botes de cada, tal como se explicó arriba. Las muestras se limpian haciéndolas pasar a través de un cartucho de fase sólida diferente al anterior. Después de la evaporación del solvente, el residuo es disuelto en una fase móvil usada para la LC/MS.
Se usa un electro spray con una fuente de ionización y un analizador de masas cuádruple. La LC separación se lleva a cabo usando una columna comercial C-18 con una fase móvil isocrática a un flujo de 0,3 ml/min. La ionización electro spray en el modo positivo es usada con iones seleccionados monitorizadamente.
Las concentraciones del analito se calcula por una interpolación lineal de una curva de calibrado construida independientemente para cada set de muestra.
Las correcciones apropiadas en el valor certificado son hechas basándose en la pureza del componente de referencia de benzoylecgonina usada para la calibración en cada método.

http://ts.nist.gov/MeasurementServices/ReferenceMaterials/archived_certificates/1508a.%20Dec%2022,%202003.pdf


Precisión

- Metabolito en orina: Benzoylecgonina
- Material de referencia estándar: SRM 1508 a
- Concentración (ng/ml): 75,1 +- 3,1----------> Desviación estámdar
- Replicas método a evaluar: n=5
85,3; 83,3; 80,3; 75,3; 70,3

- Detectar errores groseros: Test Q


Qexp = [Xd – Xd1]/R = [70,3 - 75,3]/85,3 - 70,3 = 5/15 = 1/3 = 0,333


Nivel de significación 5%
Qtab = 0,710
Qesp < Qtab ------> Aceptamos H0 : Xd pertenece a P
No hay errores groseros.

X (media)= 78,9
S"( es la desviación al cuadrado)
S" = [(85,3 - 78,9)" + (83,3 - 78,9)" + (80,3 - 78,9)" + (75,3 - 78,9)" +
(70,3 - 78,9)"]/4
S" = 37,3

- Comparación de precisiones: Test F

Fexp = S"exp/S"ref = 37,3/3,1" = 3,88 Ftab = 2,57
(Por la falta del número de muestras utilizadas en el
material de referencia tomamos n = infinito)
Grados de libertad: {nexp-1; nref-1}
Fexp > Ftab ------> S"exp - diferente - S"ref

El método a evaluar no es preciso.



jueves, 25 de marzo de 2010

Tarea 1

1) Comentar la importancia y el motivo de la determinación.
http://www.botanical-online.com/alcaloidescocaderivats.htm

La determinación se realiza para, a través de la concentración de metabolitos derivados de la cocaína, elaborar un estudio y conocer aproximadamente la cantidad de cocaína que se consume en un determinado lugar. El estudio se realiza por los efectos que trae consigo el consumir esta droga.

Tiene efecto vasoconstrictor y es además un fuerte anestésico, al interrumpir los efectos nerviosos, de ahí que durante mucho tiempo se haya utilizado en cirugía. Hoy en día, dado su carácter adictivo, se ha sustituído por otros productos, como la novocaína. Por sus efectos vasoconstrictores constituye un auténtico veneno al obstruir el riego sanguíneo en el cerebro. Igualmente, al actuar como paralizador de los centros nerviosos, puede producir la muerte por paro respiratorio. Dosis superiores a 0.5 g pueden ser mortales


2) Comentar las propiedades del analito/s.
http://www.monografias.com/trabajos30/cocaina/cocaina.shtml#intro


Entre 1863 y 1865, un químico austriaco, Wilhem Lossen, descubrió la fórmula bruta de la cocaína. Los cuatro elementos del alcaloide son el carbono, el nitrógeno, el oxigeno y el hidrógeno: C17 H21 O4 N.

ESTRUCTURA QUÍMICA
El núcleo tropánico es un heterociclo nitrogenado bicíclico: El 8-aza biciclo (3,2,1) octano. El número de alcaloides derivados de este esqueleto, es bastante escaso y su distribución muy reducida: Solanaceas, Eritroxiláceas y esporádicamente en algunas Convolvuláceas, Proteáceos, Euforbiáceas y Rizoforáceas.

Fig. Nº 2. Núcleo Tropánico



Fig Nº3 Núcleo Tropánico Visto en 3 D (Elbaum J.H.)

La característica fundamental de los alcaloides tropánicos, es la de ser ésteres de un ácido orgánico variable, y de un alcohol unido a un 3-tropanol, el 3-α-tropanol (tropanol) o al 3-β-tropanol (pseudotropanol).
En estas moléculas, el grupo N-metílico se encuentra en posición ecuatorial y el ciclo piperidínico, adopta una configuración en «silla». La configuración en 3 del tropanol y del pseudotropanol, se deduce del examen del comportamiento de algunos de sus derivados, y ha sido confirmada, por la diferencia de velocidad de hidrólisis de sus benzoatos. Así, el clorhidrato de N-acetil norpseudotropanol, se reagrupa, vía una oxacina, en un dérivado O-acetilado y este reagrupamiento no es posible en el caso del tropanol (Fig.Nº4). Estos alcoholes son ópticamente inactivos: son formas meso y los dos carbonos de unión son de quiralidad opuesta.



Fig Nº 4
Los derivados del 3-β-tropanol del tipo de la ecgonina, son especνficos de las Eritroxilaceas, mientras que los que tienen la función alcohólica secundaria en 3-α como el tropanol (Fig. Nº 4), el escopanol (= 6,7-epoxi tropanol) y derivados semejantes, son característicos -pero no exclusivos- de las Solanaceas.
Los ácidos orgánicos que esterifican estos alcoholes (Fig.Nº 5), ya sean ácidos alifáticos de pequeño peso molecular como el ácido 3-metil butírico (Fig.Nº 5), o el ácido (2E) 2-metil butenoico (= ácido tíglico) o bien sean ácidos aromáticos de C6 –C1 como el ácido benzoico o, de C6-C3 como el ácido cinámico, o el ácido (R) α-hidroxi β-fenilpropiσnico (Fig.Nº 5), o incluso el ácido (S)-(-)-trópico.

Fig Nº 5
Los principales alcaloides encontrados, son por tanto, ésteres de estos ácidos y de los tropanoles. A veces, aunque raramente, son ésteres de ácidos dimerizados (las truxilinas de la coca) y excepcionalmente pueden poseer una estructura monocíclica (secotropanos de los Physalis), incluso una estructura pirónica (bellendina de algunas Proteaceas) (Fig. Nº 6).

Fig.Nº 6

Fig. Nº 7 Cocaína Formula 3D esferas (Elbaum J.H.)


Estos alcaloides ésteres, son especialmente frágiles. Así la (-)-hiosciamina (Fig.Nº 8), se transforma rápidamente -tanto en medio ácido como en medio alcalino- en tropanol y en ácido
(-)-trópico (Fig.Nº 8), el cual por deshidratación intramolecular, se convierte en ácido, ópticamente inactivo.
En el caso de la escopolamina también llamada hioscina por autores anglosajones), la hidrólisis ácida o alcalina conduce al ácido (-)-trópico o o al ácido (±)-trópico y a la oscina compuesto ópticamente inactivo, que se desdobla al estado de benzoatos. En las condiciones suaves de una hidrólisis enzimática, se produce escopanol (o escopina) (Fig.Nº 8), que por vía química se transforma fácilmente en oscina.
Por lo que respecta a la cocaína, se hidroliza en ecgonina, metanol y ácido benzoico: y si la hidrólisis es controlada, puede formarse benzoilecgonina.
Los alcaloides ópticamente activos como la hiosciamina, se racemizan con facilidad, siendo suficiente un tratamiento a reflujo con cloroformo para transformarla en atropina. Sobre la atropina, aunque haya sido descrita a menudo y en varios vegetales, es necesario preguntarse si en todos los casos conocidos, se trata realmente de un producto natural.




Fig. Nº 8


3) Comentar las propiedades de la muestra/s.
http://www.monografias.com/trabajos11/agres/agres.shtml

Las aguas residuales son materiales derivados de residuos domésticos o de procesos industriales, los cuales por razones de salud publica y por consideraciones de recreación económica y estética, no pueden desecharse vertiéndolas sin tratamiento en lagos o corrientes convencionales. Los materiales inorgánicos como la arcilla, sedimentos y otros residuos se pueden eliminar por métodos mecánicos y químicos; sin embrago, si el material que debe ser eliminado es de naturaleza orgánica, el tratamiento implica usualmente actividades de microorganismos que oxidan y convierten la materia orgánica en CO2, es por esto que nos tratamientos de las aguas de desecho son procesos en los cuales los microorganismos juegan papeles cruciales.
El tratamiento de las aguas residuales da como resultado la eliminación de microorganismos patógenos, evitando así que estos microorganismos lleguen a ríos o a otras fuentes de abastecimiento. Específicamente el tratamiento biológico de las aguas residuales es considerado un tratamiento secundario ya que este esta ligado íntimamente a dos procesos microbiológicos, los cuales pueden ser aerobios y anaerobios.
El tratamiento secundario de las aguas residuales comprende una serie de reacciones complejas de digestión y fermentación efectuadas por un huésped de diferentes especies bacterianas, el resultado neto es la conversión de materiales orgánicos en CO2 y gas metano, este ultimo se puede separar y quemar como una fuente de energía. Debido a que ambos productos finales son volátiles, el efluente líquido ha disminuido notablemente su contenido en sustancias orgánicas. La eficiencia de un proceso de tratamiento se expresa en términos de porcentaje de disminución de la DBO inicial.
2. Tratamiento biologico de las aguas residuales
Procesos Anaerobicos
El proceso anaeróbico depende de reacciones de transferencia de H2 Inter-especies como:
Digestión inicial de las sustancias macromoleculares por Proteasas, polisacaridasas y lipasas extracelulares hasta sustancias solubles.
Fermentación de los materiales solubles a ácidos grasos.
Fermentación de los ácidos grasos a acetato, CO2 e H2.
Conversión de H2 mas CO2 y acetato en CH4 (metano) por las bacterias metanogénicas.
Las bacterias celulolíticas rompen las células en celulosa, celobiosa y glucosa libre; la glucosa es fermentada por anaerobios en varios productos de fermentación: acetato, propionato, butirato, H2 y CO2.
Las bacterias metanogénicas, homoacetogénicas o reductoras de sulfatos, consumen inmediatamente cualquier H2 producido en procesos fermentativos primarios. Los organismos claves en la conversión de sustancias orgánicas complejas en metano, son bacterias productoras de H2 y oxidantes de ácidos grasos, por ejemplo Syntrophomonas y Syntrophobacter, las primeras oxidan los ácidos grasos produciendo acetato y CO2 y las ultimas se especializan en la oxidación de propionato y genera CO2 y H2. En muchos ambientes anaeróbicos los precursores inmediatos del metano son el H2 y CO2 por parte de las bacterias metanogénicas: Metanosphaera, Stadtmanae, Metanopinillum, Metanogenium, Metanosarcina, Metanosaeta y Metanococcus.
Polimeros Complejos
Celulosa,
Otros polisacáridos,
Proteínas
Bacterias celulolíticas HIDRÓLISIS
Y otras hidrolíticas
MONOMEROS
Azucares,
Aminoácidos
Bacterias de FERMENTACION
Fermentación
H2 + CO2 ACETATO PROPIONATO
BUTIRATO
Bacterias productoras
Acetogenos Acetogenesis de H2 oxidantes de
ácidos grasos FERMENTACION
ACETATO H2 + CO2 ACETATO
Metanogenos Metanogenos
METANOGENESIS
CH4
Procesos Aerobicos
En el tratamiento aeróbico de las aguas residuales se incrementa fuertemente el aporte de oxigeno por riego de superficies sólidas, por agitación o agitación y aireación sumergida simultaneas. El crecimiento de los microorganismos y su actividad degradativa crecen proporcionalmente a la tasa de aireación. Las sustancias orgánicas e inorgánicas acompañantes productoras de enturbiamiento son el punto de partida para el desarrollo de colonias mixtas de bacterias y hongos de las aguas residuales, los floculos que, con una intensidad de agitación decreciente, pueden alcanzar un diámetro de unos mm dividiéndose o hundiéndose después. La formación de floculos se ve posibilitada por sustancias mucilaginosas extracelulares y también por las microfibrillas de la pared bacteriana que unen las bacterias unas con otras. El 40 – 50% de las sustancias orgánicas disueltas se incorporan a la biomasa bacteriana y el 50 – 60% de las mismas se degrada.
La acción degradativa o depuradora de los microorganismos en un proceso se mide por el porcentaje de disminución de la DBO en las aguas residuales tratadas. Dicha disminución depende de la capacidad de aireación del proceso, del tipo de residuos y de la carga de contaminantes de las aguas residuales y se expresa asi mismo en unidades de DBO.
El numero de bacterias de los fangos activados asciende a muchos miles de millones por ml, entre ellas aparece regularmente la bacteria mucilaginosa Zooglea ramigera, que forma grandes colonias con numerosas células encerradas en una gruesa cubierta mucilaginosa común, las células individuales libres se mueven con ayuda de flagelos polares. Entre las bacterias de los floculos predominan las representantes de géneros con metabolismo aerobio-oxidativo como Zooglea, Pseudomonas, Alcaligenes, Arthrobacter, Corynebacterium, Acinetobacter, Micrococcus y Flavobacterium. Pero también se presentan bacterias anaerobias facultativas, que son fermentativas en ausencia de sustratos oxigenados, de los generos Aeromonas, Enterobacter, Escherichia, Streptococcus y distintas especies de Bacillus. Todas las bacterias contribuyen con las cápsulas de mucílago y con las microfibrillas al crecimiento colonial y a la formación de los floculos.
En las aguas residuales con una composición heterogénea, la microflora se reparte equitativamente entre muchos grupos bacterianos. En la selección de bacterias y en la circulación y formación de floculos juegan un importante papel los numerosos protozoos existentes, la mayoría de ellos ciliados coloniales y pedunculados de los géneros Vorticela, Epystilis y Carchesium, aunque también puedan nadar libremente como los Colpidium que aparecen a la par de ellos, alimentándose de las bacterias de vida libre que se encuentran tanto sobre la superficie como fuera de las colonias. Su función es esencial en la consecución de unas aguas claras y bien depuradas.
La salida de los fangos activados sintéticos libres de ciliados se ve contaminada y enturbiada por la presencia de bacterias aisladas. Se realiza una inoculación de ciliados que crecen rápidamente, favoreciendo con su actividad depredadora el crecimiento y la circulación de las bacterias de los fangos, con lo que posibilitan un efluente mas limpio. Además en los fangos activados aparecen regularmente hongod edaficos y levaduras, siendo las mas frecuentes las especies de Geotrichum, Trichosporum, Penicillium, Cladosporium, Alternaria, Candida y Cephalosporium.
Tras la depuración biológica, las aguas residuales contienen compuestos orgánicos, fosfatos y nitratos disueltos que solo se degradaran ya lentamente. Los nitratos se forman por oxidación del amonio desprendido en la degradación de compuestos orgánicos nitrogenados. Esta es una tarea de las bacterias Nitrificantes, uno de cuyos grupos esta reprensado en las aguas residuales principalmente por Nitrosomonas y Nitrosospira, que únicamente llevan a cabo la reacción de oxidación del amonio a nitrito para obtener energía metabólica, mientras que un segundo grupo de bacterias, que aparece siempre junto al ya citado y que esta reprensado por Nitrobacter, oxida el nitrito a nitrato y obtiene energía gracias exclusivamente a este proceso:
Oxidación del amonio:
NH4 + ½ O2 à NH2OH + H
NH2OH + O2 + 2ADP + 2PO4 à HNO2 + H2O + 2 ATP
Oxidación del nitrito:
NO2 + ½ O2 + ADP + PO4 è NO3 + ATP
Otros microorganismos que también intervienen en el tratamiento aerobio de aguas residuales son: Citrobacter, Serratia, mohos y levaduras que actúan mas de componentes acompañantes que de degradantes y algunas algas como Anabaena que convierte los poliuretanos en H2; Chrorella los alginatos los convierte en glicolato; Dulaniella los alginatos en glicerol; Nostoc el agar el H2; Algas como el Volvox, Tabellaria, Anacistis y Anabaena; las algas que obstruyen los filtros son Anacistis, Chorella, Anabaena y Tabellaria.


4) Legislación española, europea, americana… sobre niveles recomendados, niveles máximos admitidos…, del analito/s en esa muestra/s.

• Orden de 12 de noviembre de 1987, normas de emisión, objetivos de calidad y métodos de medición de referencia relativos a determinadas sustancias nocivas o peligrosas contenidas en los vertidos de aguas residuales (BOE nº 280, de 23.11.87)
o Ampliada en su ámbito de aplicación por Orden de 13 de marzo de 1989, por la que se transponen normas de emisión contenidas en la Directiva del Consejo 88/347/CEE, de 16 de junio, por la que se modifica el Anexo II de la Directiva 86/280/CEE relativa a los valores límite y los objetivos de calidad para residuos de determinadas sustancias peligrosas comprendidas en la lista I del Anexo de la Directiva 76/464/CEE.
o Real Decreto-Ley 11/1995, de 28 de diciembre, por el que se establecen las normas aplicables al tratamiento de las aguas residuales urbanas. (BOE nº 312, de 30-12-95)

5) Concentración normal o usual del analito/s en esa muestra/s.
http://www.tiaft2006.org/proceedings/pdf/DA-p-17.pdf





http://www.ehjournal.net/content/4/1/14/table/T1

Table 1
*a = Cocaine and BE were analyzed by HPLC-MS/MS
*b = Cocaine loads were estimated from BE concentrations in the waters (see Methods)
*c = Mean ± SD
*d = Waste water treatment plant locations
Zuccato et al. Environmental Health: A Global Access Science Source 2005 4:14 doi:10.1186/1476-069X-4-14


http://www.ehjournal.net/content/4/1/14/table/T2

Table 2


*a15–34 yr old
*b1 dose = 100 mg
*cMean ± SD
*dWaste water treatment plant locations
Zuccato et al. Environmental Health: A Global Access Science Source 2005 4:14 doi:10.1186/1476-069X-4-14


6) Plantear y describir una problemática analítica:
‐ Real: que haya sucedido en la realidad.
‐ Simulada: que no haya sucedido y que pueda pasar o que haya sucedido y
no la sustenteis sobre una base real (datos reales)

Real
1. “Using wastewater to estimate cocaine consumption at national level”
2. Estudio CSISC en Barcelona


http://www.idaea.csic.es/innova-med/power%20point/Covac.pdf

Este es otro estudio realizado por el CSIC realizado por el centro toxicológico de la universidad de Antwerp, bélgica. Se titular: “Using wastewater to estimate cocaine consumption at national level”

Cálculos
Para concentraciones (ng/L) sobre el uso de la cocaína (g/day/1000
inh) para cada WWTP
- Basado en el metabolito BE
- 45 % de la dosis de COC se excreta como BE, con un radio molar COC/BE = 1.05
- COC = 1.05/0.45 * loads BE
- Habitantes = capacidad de WWTP
Desde g/dia/1000 hasta g/año para cada WWTP
- Week = 2 weekend-days and 5 weekdays
- Wednesday sample = week, Sunday sample = weekend
- Year = 52 weeks
•Desde g/año para cada WWTP a g/año en Bélgica
- Suma de WWTPs
- Extrapolación desde 3 700 000 a 10 500 000 habitantes
•Dede g/año en Bélgica a una dominancia anual
- Dosis media de cocaina = 100 mg
- Consumo medio de usuarios 0.65 g/week (Everingham, 1994;
Cohen, 1994)

Resultados
Ciudades > País
- Antwerp: 3 WWTPs
- 2 reciben aguas residuales principalmente desde el centro (Deurne y
Antwerp South)
- 1 recibe aguas residuales desde más áreas rurales (Antwerp North)
- Resultados:
• Deurne: 0.93 g/day per 1000 inh
• Antwerp South: 1.4 g/day per 1000 inh
• Antwerp North: 0.27 g/day per 1000 inh
Resultados a nivel nacional
1.88 toneladas son usadas actualmente en Bélgica (la policía estima que la cantidad confiscada es igual a 2.0 t)
•Annual dominancia:
- 0.53% total de la población
- 0.80% edades ente 15-64 años
- 1.32% edades entre 15-44 años
•Los valores son concordante con los estudios sociológicos (EMCDDA):
- En Europa: el rango va desde un 0.1% a un 3%

http://www.20minutos.es/noticia/342311/0/droga/cocaina/estupefacientes/

El estudio se ha centrado en la planta depuradora de El Prat, donde se tratan los vertidos de 1,3 millones de habitantes de Barcelona y su entorno, algo menos de la mitad del total de la población del área metropolitana.

Los resultados obtenidos han revelado que 1,3 millones de personas consumen unas 20.000 dosis diarias de cocaína, lo que supone entre 1,5 y 2 kilos de esta sustancia estupefaciente, si bien estas cifras se duplican cuando llega el fin de semana, en que los niveles crecen hasta las 40.000 dosis.
Los datos de Barcelona doblan prácticamente a los obtenidos en Valencia y Milán. En cualquier caso, la presencia de metabolitos de la cocaína en las aguas residuales no tiene efectos en el agua de grifo, ya que más del 95 por ciento de estas sustancias se eliminan por completo en las plantas depuradoras.

http://www.publico.es/ciencias/028713/rios/cocaina/damia/barcelo

No hemos encontrado el estudio anterior realizado por el CSIC, para dar datos experimentales de metabolitos de el analito estudiado, pero rastreando internet se puede encontrar artículos periodísticos que den un valor experimental que se ajuste mas o menos a la realidad, como es el caso de el científico Damià Barceló (Lérida, 1954), del Instituto de Investigaciones Químicas y Ambientales de Barcelona (CSIC), el cual afirma : “en los ríos hay unos 300 nanogramos por litro de benzoilecgonina, el principal metabolito de la cocaína.” “Una dosis de cocaína son 100 miligramos y en el río estamos hablando de nanogramos, sería necesario beber 100.000 litros para notar los efectos”
http://www.dicat.csic.es/drogas_aire-esp.pdf

Como curiosidad le dejamos el link que describe una de las primeras metodologías analíticas para detectar este tipo de analitos en el aire, aunque no se ciña a las aguas residuales.